使用方法：

 1. 貼壁細胞的消化：

 a. 吸去培養液，用無菌的 PBS、Hanks 液或無血清培養液洗滌細胞一次，以去除殘余的血清。

 b. 加入少量胰酶消化液，略蓋過細胞即可，室溫放置 30 秒至 2 分鐘。不同的細胞消化時間有所不同。

 c. 顯微鏡下觀察，細胞明顯收縮，并且肉眼觀察培養器皿底部發現細胞的形態發生明顯的變化；或者用槍吹打細胞發現細 胞剛好可以被吹打下來。此時吸除胰酶消化液。加入含血清的完全細胞培養液，吹打下細胞，即可直接用于后續實 驗。

 d. 如果發現消化不足，則加入胰酶細胞消化液重新消化。 如果發現細胞消化時間過長，未及吹打細胞，細胞已經有部分直接從培養器皿底部脫落，直接用胰酶細胞培養液把細胞全部吹打下來。1000-2000g 離心 1 分鐘，沉淀細胞，盡量去除胰酶細胞消化液后，加入含血清的完全培養液重新懸浮細胞， 即可用于后續實驗。

 2. 組織的消化：

 a. 不同的組織需要消化的時間相差很大，通常以消化后可以充分打散組織為宜。

注意事項：

 1.在使用胰酶細胞消化液的過程中要特別注意避免消化液被細菌污染。

 2.胰酶細胞消化液消化細胞時間不宜過長，否則細胞鋪板后生長狀況會較差。

 3.本產品僅限于專業人員的科學研究用，不得用于臨床診斷或治療，不得用于食品或藥品，不得存放于普通住宅內。

 4.為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。

附錄：不同胰酶細胞消化液的比較和選擇

 1. 如果希望消化能力比較強，推薦使用含有 EDTA 的胰酶消化液，消化能力相對更強一些。 

 2. 如果希望觀察比較方便，推薦選擇含酚紅的胰酶消化液。

 3. 對于酚紅可能會干擾后續的測試分析，推薦選擇不含酚紅的胰酶消化液。

 4. 對于 EDTA 可能會干擾后續的測試分析時，推薦不含 EDTA 的胰酶消化液。